在蛋白質(zhì)研究中，脫鹽是純化流程中的關(guān)鍵環(huán)節(jié)。Viskase透析袋憑借其選擇性滲透性、化學(xué)穩(wěn)定性和操作便捷性，成為實驗室脫鹽的工具。本文結(jié)合標(biāo)準(zhǔn)化操作流程與常見問題解決方案，為科研人員提供系統(tǒng)指導(dǎo)。 一、標(biāo)準(zhǔn)化操作流程
（一）材料準(zhǔn)備與預(yù)處理
透析袋選擇
根據(jù)目標(biāo)蛋白分子量選擇截留分子量（MWCO）匹配的透析袋。例如，目標(biāo)蛋白分子量6000道爾頓時，需選用MWCO 3500-8000的透析袋。Viskase提供31-1000KD CE膜即用型產(chǎn)品，出廠前已完成化學(xué)清洗與質(zhì)檢，可直接使用。
透析袋預(yù)處理
傳統(tǒng)型透析袋：剪取所需長度（通常為樣品體積的2-3倍），置于50%乙醇中煮沸1小時，依次用0.01mol/L碳酸氫鈉、0.001mol/L EDTA溶液清洗，最后用蒸餾水沖洗3次。
即用型透析袋：取出后直接浸泡于目標(biāo)緩沖液中平衡15-30分鐘，去除可能殘留的保護(hù)劑。
（二）裝樣與密封
樣品裝載
使用移液器將待脫鹽蛋白溶液注入透析袋，避免液體溢出。裝樣量不超過透析袋容積的2/3，防止膨脹破裂。
密封處理
用專用夾子或綁帶封閉透析袋兩端，確保密封性。密封后擠壓透析袋，檢查是否有液體泄漏。若發(fā)現(xiàn)氣泡逸出，需更換新透析袋。
?。ㄈ┩肝鰲l件控制
透析液選擇
通常使用去離子水或目標(biāo)緩沖液（如PBS）。若需置換緩沖體系，需分步進(jìn)行：先透析至低鹽緩沖液，再逐步調(diào)整至目標(biāo)條件。
透析參數(shù)設(shè)定
時間：根據(jù)鹽濃度和樣品量調(diào)整，通常為6-24小時。高鹽樣品需延長至48小時，并每4-6小時更換透析液。
溫度：常規(guī)實驗在4℃進(jìn)行，以維持蛋白穩(wěn)定性；對熱穩(wěn)定蛋白可在室溫（25℃）下操作。
攪拌：使用磁力攪拌器以50-100rpm速度攪拌透析液，消除膜外濃度梯度，提高脫鹽效率。
?。ㄋ模┟擕}效果驗證
納氏試劑檢測
取透析外液1ml，加入納氏試劑，若溶液呈黃色，說明仍含銨鹽，需繼續(xù)透析；若為無色，則脫鹽完成。
電導(dǎo)率監(jiān)測
使用電導(dǎo)率儀實時監(jiān)測透析液電導(dǎo)率，當(dāng)數(shù)值穩(wěn)定且接近去離子水水平時，表明脫鹽達(dá)標(biāo)。
二、避坑指南與常見問題解決方案
（一）透析袋破損問題
原因：機(jī)械損傷、預(yù)處理不當(dāng)或MWCO選擇過小。
解決方案：
操作時輕拿輕放，避免尖銳工具接觸透析袋。
根據(jù)蛋白分子量選擇MWCO，通常為目標(biāo)分子量的1.5-2倍。
預(yù)處理后用蒸餾水充分沖洗，去除殘留雜質(zhì)。
（二）脫鹽效率低下
原因：透析時間不足、透析液更換不及時或膜表面積不足。
解決方案：
延長透析時間至24-48小時，并每4-6小時更換透析液。
增加透析袋長度或使用多袋并聯(lián)，擴(kuò)大膜表面積。
采用連續(xù)循環(huán)透析裝置，通過棉線引導(dǎo)透析液流動，加速小分子擴(kuò)散。
?。ㄈ┑鞍谆钚該p失
原因：透析液pH或離子強度不適配，或操作過程中蛋白變性。
解決方案：
預(yù)平衡透析袋時使用與蛋白儲存液成分相近的緩沖液。
避免使用強酸、強堿或高濃度變性劑（如8M尿素）作為透析液。
對熱敏感蛋白，全程在4℃下操作，并添加蛋白保護(hù)劑（如0.1%BSA）。
?。ㄋ模┩肝龃貜?fù)使用風(fēng)險
原因：殘留蛋白或雜質(zhì)影響后續(xù)實驗。
解決方案：
僅對低價值樣品或預(yù)實驗使用重復(fù)透析袋。
重復(fù)使用前需用1%SDS溶液煮沸30分鐘，再用蒸餾水沖洗。
避免重復(fù)使用處理過強腐蝕性樣品的透析袋。
